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Hola a todos. En el vídeo de hoy mostraremos el procedimiento

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00:00:12,720 --> 00:00:18,080
para llevar a cabo la preparación de una muestra de jamón serrano, con el fin de determinar

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mediante potenciómetría la cantidad de cloruros de la misma. Además, tras la realización

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00:00:23,720 --> 00:00:29,480
de la práctica alcanzaremos otros dos objetivos, realizar un filtro de pliegues y aprender a

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00:00:29,480 --> 00:00:35,600
trabajar de forma segura con la centrífuga. El fundamento teórico de esta práctica lo

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00:00:35,600 --> 00:00:41,360
encontraréis en las presentaciones de las unidades de trabajo 3 y 4. Recordad estudiar

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00:00:41,360 --> 00:00:46,560
dichas presentaciones antes de la realización de la práctica, haciendo especial hincapié

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00:00:46,560 --> 00:00:52,760
en las operaciones de triturado de la muestra, centrifugación y filtración por gravedad.

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00:00:52,760 --> 00:00:58,440
Como veréis más adelante, vais a necesitar diferentes disoluciones que prepararéis vosotros,

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00:00:58,440 --> 00:01:03,480
así que coged los apuntes del módulo de química aplicada y repasad los cálculos

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00:01:03,480 --> 00:01:12,240
y procedimientos para prepararlas. ¿Estáis listos? ¡Comenzamos!

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00:01:12,240 --> 00:01:20,520
Para realizar esta práctica vamos a necesitar pesasustancias y espátula, balanza de precisión,

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00:01:20,520 --> 00:01:28,160
vasos de precipitados, agitador magnético con calefacción, cuchillo o tijeras, embudo

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00:01:28,160 --> 00:01:38,840
cónico liso, filtro de pliegues, varilla de vidrio, soporte universal, aro y nuez,

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00:01:38,840 --> 00:01:47,600
centrífuga y tubos de centrífuga, bote guardamuestras, etiquetas y bolígrafo, 150 ml de etanol al

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00:01:47,600 --> 00:01:57,120
40%, 25 ml de reactivo de Carré 1 y 2 al 15 y 30% respectivamente y una muestra de

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00:01:57,120 --> 00:02:11,800
jamón serrano del supermercado. Comencemos con el procedimiento.

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00:02:11,800 --> 00:02:18,280
En primer lugar pesamos en balanza de precisión aproximadamente 10 gramos de jamón serrano.

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00:02:18,280 --> 00:02:24,480
Posteriormente lo troceamos. Depositamos la muestra en un vaso de precipitados

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00:02:24,480 --> 00:02:32,360
de 250 ml y añadimos 150 ml de la disolución de etanol al 40%.

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00:02:32,360 --> 00:02:36,560
Llevaremos el vaso de precipitados con la muestra y la disolución de etanol a un agitador

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00:02:36,560 --> 00:02:41,440
magnético con calefacción. Calentaremos y agitaremos suavemente durante

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00:02:41,440 --> 00:02:47,240
una hora evitando en todo momento que el etanol entre en ebullición.

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00:02:47,240 --> 00:02:52,740
Transcurrido este tiempo se observará un viraje del color de la disolución de transparente

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00:02:52,740 --> 00:03:01,240
a blanquecino debido a la presencia de grasas. Retiramos con protección térmica adecuada

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00:03:01,360 --> 00:03:03,720
el vaso de precipitados de nuestro agitador magnético.

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00:03:03,720 --> 00:03:10,720
A continuación filtraremos mediante gravedad el contenido de nuestro vaso de precipitados.

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00:03:12,080 --> 00:03:16,640
El montaje de la filtración por gravedad habrá sido preparado durante la agitación

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00:03:16,640 --> 00:03:21,740
de una hora. Al filtrado resultante hemos de añadirle

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00:03:21,740 --> 00:03:27,880
los dos reactivos de Carré, concretamente 5 ml de cada uno.

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00:03:27,880 --> 00:03:33,680
Una vez añadidos se observarán unos precipitados gelatinosos y blancos.

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00:03:33,680 --> 00:03:39,520
Dejaremos reposar unos minutos y a continuación centrifugaremos durante 5 minutos a 2000 revoluciones

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00:03:39,520 --> 00:03:43,620
por minuto. Nuestro objetivo con este paso es separar

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00:03:43,620 --> 00:03:49,440
las proteínas del líquido. Estas son ese precipitado gelatinoso y blanco

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00:03:49,440 --> 00:03:52,800
fruto de la adicción de los reactivos de Carré.

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00:03:52,800 --> 00:03:57,400
Para llevar a cabo la centrifugación debemos repartir la mezcla en los distintos tubos

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00:03:57,400 --> 00:04:02,200
de centrifugación resultando el mismo peso de cada uno de ellos.

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00:04:02,200 --> 00:04:06,920
A continuación dispondremos los distintos tubos en la centrifugación de tal forma que

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00:04:06,920 --> 00:04:12,440
estén enfrentados. Tras la centrifugación decantaremos el sobrenalante

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00:04:12,440 --> 00:04:18,360
puesto que es en este sobrenalante donde se encuentran nuestros cloruros de interés.

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00:04:18,360 --> 00:04:23,040
Puede ocurrir que parte del precipitado quede aún flotando en nuestro sobrenalante y tenemos

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00:04:23,040 --> 00:04:27,520
que filtrar nuevamente. En este caso no necesitamos un filtro de

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00:04:27,520 --> 00:04:33,720
pliegues, con un filtro liso es suficiente. Eso sí, esta vez el volumen del filtrado

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00:04:33,720 --> 00:04:40,040
ha de ser medido, lo haremos con una probeta. Ya por último nos queda conservar la muestra

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00:04:40,040 --> 00:04:46,680
hasta su análisis por potenciómetría. La muestra ha de ser conservada en un recipiente

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00:04:46,680 --> 00:04:54,200
de material adecuado, en este caso polietileno. Se conservará a 4 grados hasta su análisis.

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00:04:54,200 --> 00:04:59,240
Antes de meter la muestra en la nevera recuerda etiquetarla. La etiqueta debe contener toda

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00:04:59,240 --> 00:05:04,640
la información necesaria para su identificación. No olvides anotar el volumen de muestra puesto

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00:05:04,640 --> 00:05:10,080
que este es muy importante a la hora de dar el resultado final tras el análisis por potenciómetría.

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00:05:16,680 --> 00:05:19,680
Subtítulos realizados por la comunidad de Amara.org