UT5 - Clonación Molecular - 1ª Parte - Contenido educativo
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Bien, vamos a empezar la unidad de trabajo 8 sobre clonación de ácidos nucleicos.
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En realidad es la unidad de trabajo 7 del libro, pero como nosotros hemos visto primero la unidad de trabajo 7
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como el tema de bioinformática, este tema de clonación de ácidos nucleicos es la número 8.
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Este tema es importante y también es relativamente complicado.
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De hecho, junto con el tema 6 y el tema 9 son quizá los temas más complejos de las técnicas de biología molecular que vamos a ver.
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Primero vamos a ver, en la clase de hoy vamos a ver los métodos de clonación molecular,
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algunas generalidades, que es esto de la clonación molecular y los componentes de la clonación molecular.
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Es decir, qué elementos necesitamos para poder llevar a cabo una clonación.
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La clonación molecular o para clonar un gen.
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Dejaremos para las siguientes clases las fases de este proceso de clonación,
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cómo construir bibliotecas de DNA y un último apartado donde vamos a hablar de las aplicaciones de la clonación molecular en la actualidad,
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sobre todo en laboratorios de investigación biomédica.
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¿Qué es esto de la clonación molecular?
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Pues la clonación molecular no es ni más ni menos que un proceso de amplificación.
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De una secuencia.
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Ya conocemos las técnicas de PCR que son técnicas de amplificación de una secuencia.
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Para las técnicas de PCR necesitamos primers, necesitamos TAC polimerasa, necesitamos DNTPs, necesitamos cloruro de magnesio, buffer, etc.
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La PCR es un proceso de amplificación in vitro.
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En este caso la clonación.
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La clonación molecular es un proceso de amplificación in vivo.
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Lo vamos a llevar a cabo no en un tubo de ensayo y en un termociclador, sino que lo vamos a llevar a cabo en células.
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De tal manera que el fragmento, la secuencia, que puede ser de cDNA, o sea, DNA complementario, o puede ser de un DNA genómico,
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esa secuencia de interés que queremos amplificar, la vamos a introducir en un ser vivo, en una célula,
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vamos a permitir que la célula se expanda, se divida y a partir de una célula obtengamos millones y millones y millones de células
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y de ellas cada célula llevará una copia de esa secuencia, de las cuales después de cultivarlas in vitro podremos aislar la secuencia de interés de todas esas células.
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Es por ello que este proceso se le llama clonación.
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Clonación molecular, porque vamos a utilizar clones de células que van a amplificar in vivo un fragmento de cDNA, de DNA genómico,
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basado en lo que llamamos la tecnología del DNA recombinante.
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¿De acuerdo?
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Esta tecnología del DNA recombinante es muy importante.
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Tuvo su boom a nivel científico, sobre todo durante los años 70,
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pero son técnicas que se utilizan mucho en los laboratorios de investigación,
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sobre todo cuando queremos estudiar genes que no conocemos y los estamos estudiando por primera vez.
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Os recuerdo que el cDNA es el DNA copia, no existe como tal en la naturaleza,
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acordaos que se le llama DNA copia o DNA complementario porque es la copia
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obtenida a partir de un DNA genómico.
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Y es un DNA que se utiliza mucho en los laboratorios de investigación, sobre todo cuando queremos estudiar genes que no conocemos y los estamos estudiando por primera vez.
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A partir de un RNA de una célula, ¿de acuerdo?
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El enzima que lleva a cabo esta reacción de transcripción inversa,
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acordaos que es la transcriptasa inversa o retrotranscriptasa,
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que utiliza un RNA como molde para sintetizar un DNA copia.
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¿Qué es el DNA copia?
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A grandes rasgos de forma general,
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genérica, el proceso de clonación molecular, ya veis que hablamos de clonación molecular, clonación porque utilizamos clones de células y vamos a obtener copias exactas y por eso de ahí viene el nombre de clon y es molecular porque lo que vamos a clonar no son las células, sino que vamos a clonar y vamos a amplificar DNA, pues es una clonación molecular.
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Es muy diferente al concepto de clonación de seres vivos, de animales por ejemplo, no tiene nada que ver.
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El proceso de clonación tiene cuatro pasos fundamentales y los tenemos que conocer. El primer paso es la inserción, vamos a insertar un fragmento de DNA, el que queremos amplificar,
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nuestro fragmento.
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El fragmento de DNA de interés en una molécula que nos va a servir, va a ser una molécula portadora, va a transportar ese fragmento dentro de las células que veremos ahora, ¿de acuerdo?
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Por tanto, el primer paso es, voy a coger de todo el DNA de la célula, imaginaos que yo quiero amplificar solamente un gen, un único gen, de todo el DNA genómico de esta célula eucariota,
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que está dentro del núcleo, lo primero que hago es lizar esta célula, obtener, extraer y purificar su DNA y de aquí voy a aislar el fragmento, ojo, si recordáis, yo en las técnicas de PCR, a partir de este DNA genómico, con dos primers, un forward y un reverse, lo amplifico in vitro, aquí no, aquí voy a coger todo el DNA genómico,
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de mis células y voy a cortar con unos enzimas de restricción el fragmento que me interesa, con dos enzimas de restricción o un único enzima de restricción, en la parte de delante, cinco prima y la parte de atrás, tres prima, del fragmento que me interesa y lo voy a purificar, de tal manera que a partir del DNA genómico, yo no amplifico nada, no estoy amplificando, sino que estoy aislando y purificando,
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mi fragmento, ¿cómo lo hago?, cortándolo directamente de la molécula de DNA genómico, una vez ya tengo aislado y purificado este fragmento, lo que voy a hacer va a ser insertarlo, ¿en qué lo voy a insertar?, lo inserto en un vector, aquí nos han puesto el ejemplo de un fragmento de DNA genómico eucariota, que lo voy a insertar en un vector bacteriano,
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¿veis que esto es una bacteria?
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o representa una bacteria, donde tiene su DNA cromosómico, que sabemos que es circular y muy grande y también contiene moléculas circulares bicatenarias más pequeñas, que son los plásmidos, yo a partir de este plásmido lo puedo linearizar, es decir, también lo puedo cortar y en lugar de este fragmento propio del plásmido, lo voy a sustituir por mi fragmento de intestino,
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de tal manera que voy a obtener una molécula híbrida, híbrida en el sentido de que tiene una parte plasmídica bacteriana y una parte eucariota, en este caso, que lleva el inserto, ¿de acuerdo?, a este fragmento de interés, y ya vamos entrando en terminología de clonación molecular, a este fragmento de interés lo llamamos inserto, ¿de acuerdo?,
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pues cuando hablemos del inserto queremos referirnos a este fragmento de DNA, ¿por qué lo llamamos inserto?, porque lo vamos a insertar, ¿dónde lo vamos a insertar?, en un vector, este plásmido es el vector, ya veremos que hay muchos tipos de vectores, en este caso, este plásmido bacteriano es nuestro vector, en este vector voy a introducir el inserto,
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¿de acuerdo?, y voy a obtener lo que llamamos un vector recto.
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El vector recto es el vector recombinante, por tanto, tenemos el inserto, tenemos el vector y tenemos el vector recombinante, que es aquel vector que ha introducido, que tiene en su secuencia insertada el fragmento, insertado el fragmento de interés, el inserto, ¿de acuerdo?, vale.
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El segundo paso, una vez ya he obtenido mi vector recombinante, es introducirlo.
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De nuevo, en células que llamamos hospedadoras, células vivas hospedadoras, como este es un plásmido bacteriano, lo normal es este plásmido meterlo en células de origen bacteriano, bacterias, no son bacterias cualquiera, son bacterias que están tratadas y se le llaman bacterias competentes, todo esto lo veremos más adelante en el tema.
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El segundo paso es la introducción del vector recombinante en la célula hospedadora.
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El tercer paso es la selección y multiplicación, es decir, ahora esta bacteria que ha introducido y tiene dentro el vector recombinante lo llamamos clon recombinante.
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Ahora ya es un clon recombinante que lo voy a poner en cultivo para que se pueda dividir y obtener millones.
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Millones y millones y millones de copias, ¿vale?, de clones exactamente idénticos a esta célula recombinante, a este clon recombinante, ¿de acuerdo?
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Claro, uno puede decir, sí, perfecto, pero ¿cómo diferencio yo aquellas bacterias que son recombinantes y tienen el vector recombinante de aquellas bacterias que no lo han introducido?
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Por eso, vamos a verlo ahora más adelante.
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Más adelante necesitamos un proceso de selección.
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Hay que seleccionar de todas las bacterias que tenga al final, voy a seleccionar las que tengan el clon recombinante y las otras las voy a, bueno, me las voy a cargar, ¿de acuerdo?
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Las voy a alisar.
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Ya veremos qué métodos de selección tenemos.
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Por tanto, primer paso, hemos obtenido el vector recombinante.
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En el segundo obtenemos el clon recombinante.
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El tercer paso es la multiplicación, división celular y la selección.
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Y por último, una vez ya tengo todas mis células seleccionadas de tal manera que yo sé que todas las células son recombinantes, ahora las puedo a todas alisar y purificar de ahí el vector recombinante, volver a cortarlo,
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y ya obtendría...
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El fragmento, recupero el inserto, el fragmento amplificado.
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Si recordáis, partía de un clon que tiene un único fragmento, un único inserto con un plásmido.
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Después de dejarlas en cultivo in vitro, ¿de acuerdo?
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De cultivo in vitro, voy a tener millones y millones de bacterias y por tanto millones y millones y millones de copias de este fragmento.
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Que yo ahora puedo alisar estas células y obtener de nuevo este fragmento.
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Por tanto, como veis, la clonación molecular es una técnica de amplificación in vivo de un fragmento determinado de cDNA o DNA genómico, que me interesa.
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¿De acuerdo?
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¿Qué ventajas tiene la clonación molecular?
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Porque claro, uno puede decir, pero si tengo que purificar y aislar el fragmento, luego debo introducirlo en un plásmido.
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Este plásmido lo tengo que introducir en estas células.
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Debo dejar que se multipliquen.
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Luego tengo que seleccionar estas células y más adelante, recuperar el fragmento amplificado,
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pues seguramente puedo estar fácilmente una semana en la clonación molecular.
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Para hacer lo mismo que una PCR podría hacer en dos o tres horitas de trabajo.
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¿De acuerdo?
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Sí, eso es cierto.
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Es un proceso mucho más largo, pero conlleva unas ventajas y unas diferencias que veremos ahora después con respecto a las técnicas de PCR.
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La primera es que, la primera ventaja es que podemos obtener cantidades ilimitadas de la secuencia de interés.
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Es decir, yo estas células, esta célula la puedo cultivar en un matraz aforado, que son bacterias, de 250 mililitros.
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O en un matraz aforado de 500 mililitros.
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O en un matraz aforado de 1000 mililitros, por tanto de un litro.
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O en un matraz aforado de 2 litros, que no sé si existen.
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O en un tanque industrial de 600 litros.
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Lo que quiero decir es que,
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dependiendo del volumen de medio de cultivo en el cual tengo estas células,
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puedo obtener trillones y trillones y trillones de células y por tanto de copias amplificadas.
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Esta cantidad ilimitada de amplificación, esta amplificación ilimitada de una secuencia de interés, no puedo realizarlo con la PCR.
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La clonación me permite también,
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me permite también la clonación de secuencias de DNA de gran tamaño.
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Por PCR puedo amplificar un tamaño máximo de 35 kilobases.
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¿De acuerdo? 35 mil letras.
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Aquí puedo, ya lo veremos, puedo incluso tener insertos, insertos de un millón de pares de bases, una megabase.
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¿De acuerdo?
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Y que son, ya lo veremos ahora, porque los puedo introducir en vectores muy grandes que los llamamos cromosomas.
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¿De acuerdo? Unos cromosomas artificiales.
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Ojo, que lo veremos ahora después.
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Tercera ventaja.
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Puedo crear librerías genómicas y librerías de DNA complementario, de cDNA.
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Esto lo veremos en un apartado exclusivo para las librerías o bibliotecas de DNA.
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Y por último puedo producir proteínas, hormonas y obtener organismos transgénicos, terapia génica, etcétera, etcétera.
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Es decir, las aplicaciones.
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Las aplicaciones que tiene la clonación molecular son, bueno, tiene una serie de aplicaciones que son imposibles de conseguir con las técnicas de PCR.
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Todo esto ya lo veremos.
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Es decir, mirad, ¿cómo que puedo producir proteínas?
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Pues mirad, sabéis que hay una enfermedad que se llama la diabetes, que la sufren muchas personas en nuestra población, que lo que ocurre es que les falta el gen de la insulina,
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tienen mutaciones o tienen una producción baja de insulina y tienen que administrarse insulina varias veces al día o últimamente los tratamientos actuales es una vez al día.
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¿De dónde viene esa insulina?
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Esa insulina es una proteína.
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La insulina es una proteína, es una hormona proteica, muy pequeñita, tiene nueve aminoácidos.
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Esa insulina, ¿cómo se ha conseguido?
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Pues es una insulina recombinante.
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Es decir, es una insulina que hemos aislado su gen.
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Lo hemos clonado en un plásmido, lo hemos metido en bacterias.
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Ojo, esta bacteria en su interior ahora tiene un gen eucariota humano, que es el gen de la insulina.
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Y por las características del plásmido voy a multiplicar estas células y voy a hacer que la maquinaria de la célula sea capaz de leer y transcribir este gen.
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Por tanto...
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Las baterías las voy a utilizar como biofactorías.
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De tal manera que una vez haya introducido el gen de la insulina voy a obligar a todas estas bacterias
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a que lean, transcriban el gen y
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produzcan la proteína con sus ribosomas.
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De tal manera que voy a tener a 300 ayudantes, 300 soldaditos,
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como trillones de biofactorías que van a producir insulina
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y la van a secretar al medio de cultivo.
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De tal manera que yo ahora puedo recoger el medio de cultivo,
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aislar y purificar la insulina y prepararla en plumas o en bolígrafos
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para los pacientes de diabetes.
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Esta aplicación es, por supuesto, impensable en técnicas de PCR
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porque son técnicas únicamente de amplificación.
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Aquí, además de amplificar ese fragmento, puedo hacer que las bacterias hagan más cosas.
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Por tanto, la clonación molecular tiene una serie de aplicaciones
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mucho más amplias y de mayor aplicación clínica, por ejemplo, que las técnicas de PCR.
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Aquí el libro os pone esta tabla. Está muy bien, una tabla comparativa.
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Si no la hubiera puesto el libro, os...
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os hubiera pedido que la hicierais vosotros.
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Sabemos que es clonación molecular.
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La primera diferencia es que esta es in vivo y esta es in vitro, por supuesto.
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Aquí el fragmento en clonación molecular, el fragmento de interés,
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lo introducimos en una célula viva y vamos a aprovechar su maquinaria replicativa
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para amplificarlo.
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Y aquí, sin embargo, el DNA lo vamos a amplificar in vitro, en un tubo de ensayo,
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en condiciones artificiales que las vamos a generar en nuestro tubo de PCR.
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¿De acuerdo?
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Por tanto, un contexto in vivo, un contexto in vitro.
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La clonación molecular es una técnica manual y dura varios días, ya hemos dicho,
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fácilmente una semana.
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Mientras que la PCR es automatizada, puede ser automatizada, de hecho,
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existen robots que realizan las PCRs introduciendo los reactivos,
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hacen la PCR, corren el gel de agarosa y nos dan el resultado.
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Y eso en una...
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en unas horitas.
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¿De acuerdo?
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En clonación molecular, esta técnica nos permite obtener prácticamente cualquier cantidad de DNA,
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cantidades ingentes de DNA.
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Mientras que aquí, la cantidad que obtenemos de amplicones,
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de amplicones, varía dependiendo del número de ciclos,
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pero hay un número de ciclos máximo, que son 40, acordaos.
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¿De acuerdo?
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A partir de 40 ciclos, la TAC polimerasa se empieza ya a deteriorar
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y ya no se...
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no se especifica.
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¿De acuerdo?
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Y por último, la clonación molecular nos permite amplificar secuencias de DNA
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larguísimas, incluso millones de pares de bases,
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mientras que aquí, el amplicón máximo, las PCRs de cadena larga, ¿de acuerdo?
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Pues el tamaño máximo es de unas 35 kilobases, 35.000 pares de bases.
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¿De acuerdo?
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Frente a los millones de pares de bases que se pueden obtener,
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es importante conocer las similitudes entre ambas técnicas
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y las diferencias para saber cuándo puedo utilizar una,
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cuándo debo utilizar la otra.
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¿De acuerdo?
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No sería raro que preguntara algunas cosas relacionadas con esto.
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Vamos a ver ahora los componentes de la clonación,
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es decir, qué elementos, qué componentes necesitamos
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para realizar una clonación.
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Lo primero, ya hemos ido hablando de algunos de ellos,
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lo primero que necesitamos son vectores de clonación.
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¿Qué es un vector de clonación?
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De forma genérica, nosotros, y tiro para atrás,
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aquí hemos hablado de un caso particular, un ejemplo particular,
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en el que hemos utilizado un vector bacteriano, que es un plásmido,
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y como células hospedadoras, bacterias.
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Pero podemos utilizar otro tipo de vectores, que los veremos ahora,
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y también podemos,
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y también podemos introducirlos en otro tipo de células.
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Pues un vector de clonación, de forma genérica, son moléculas de DNA
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que pueden replicarse autónomamente en una célula huésped.
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Por tanto, una célula huésped, yo puedo introducir un plásmido o un vector,
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así vamos a hablar de forma genérica, un vector,
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lo introduzco en esa célula y él por sí solo se puede replicar dentro de la célula,
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de tal manera que de una copia de ese vector pueda tener más.
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Primera característica, por tanto, de los vectores deben ser autorreplicativos.
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Y segunda característica, que permitan que yo le pueda insertar un DNA extraño
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sin que pierdan esa capacidad de replicación autónoma.
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Son las dos características que le voy a pedir a cualquier molécula
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para que pueda servirme de vector de clonación.
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Ya sabéis que este DNA,
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que no es propio, sino que es extraño para el vector,
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porque no es suyo, no es de su secuencia,
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lo llamamos inserto.
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Inserto es el fragmento de DNA que voy a clonar en el vector.
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¿De acuerdo?
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¿Qué características deben tener los vectores de clonación?
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Esta parte es muy importante.
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¿De acuerdo?
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Cuatro características fundamentales.
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Todos los vectores de clonación, todos, sin excepción,
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ninguna, deben contener estas cuatro características,
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estos cuatro componentes en su secuencia.
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¿De acuerdo?
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Por tanto,
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estas características son aspectos que debo tener en cuenta
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para que una molécula de DNA la pueda utilizar como vector.
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Es decir, ¿cómo elijo el vector?
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Pues primero, para que sea un vector, debe cumplir estas cuatro condiciones.
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Si no cumple alguna de ellas, no es vector.
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Y no lo voy a utilizar para clonación molécula.
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Primero, debe contener un origen de replicación.
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Si os acordáis, para que un fragmento de DNA se pueda replicar,
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tanto si es bacteriano como eucariota,
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requiere de un origen de replicación.
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Si os acordáis del tema 2, ya vimos esto,
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y en bacterias lo llamábamos el oricé,
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es una secuencia donde se va a anclar la maquinaria de replicación,
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y se va a anclar la maquinaria de replicación,
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de tal manera que a partir del origen de replicación
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se va a replicar toda la molécula.
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Por tanto, si yo quiero que el vector sea autorreplicativo,
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debe contener un origen de replicación.
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El origen de replicación, ya veremos, puede ser bacteriano,
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puede ser eucariota, dependiendo de la célula donde yo lo vaya a meter,
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pondré uno o pondré otro.
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Segunda característica, debe contener un sitio de inserción múltiple.
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Es lo que llamamos un polilínquer, ¿de acuerdo?
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Entonces, en la secuencia del vector va a haber una región,
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lo vamos a ver ahora,
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una región que va a ser la región donde se va a insertar el DNA
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que queremos amplificar, ¿de acuerdo?
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Es lo que llamamos el polilínquer.
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Y este polilínquer está formado,
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tiene un poquito hacia adelante, por aquí se ve muy bien,
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aquí tenemos un plásmido,
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vamos a volver a repasar ahora después,
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donde tenemos el origen de replicación
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y tenemos un polilínquer, aquí lo tenemos,
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que es una región en la cual encontramos la secuencia,
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su secuencia, la secuencia de esta región,
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no es ni más ni menos que la secuencia de restricción
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de un montón de enzimas de restricción una detrás de la otra.
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¿Os acordáis?
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Los enzimas de restricción eran aquellos enzimas que se unían al DNA
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y eran capaces de reconocer una secuencia diana
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o secuencia de restricción y cortar el DNA.
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De tal manera que en este polilínquer,
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este polilínquer en concreto,
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puede ser reconocido por todos estos enzimas de restricción.
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¿Por qué?
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Porque aquí una detrás de otra
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están todos los polilínquers,
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todas las secuencias específicas
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que reconocen todos estos enzimas de restricción.
00:26:07
Por tanto, para cortar este vector,
00:26:10
como si fuera con unas tijeras,
00:26:13
yo puedo utilizar cualquiera de estos enzimas de restricción.
00:26:15
Cualquiera de ellos van a ir chequeando por aquí
00:26:19
dónde está su secuencia diana
00:26:22
y ahí lo van a cortar.
00:26:23
De tal manera que una vez yo lo haya cortado,
00:26:26
aquí en este punto de corte,
00:26:28
una vez este plásmido ya lo he linearizado,
00:26:31
ya no es circular, lo he linearizado,
00:26:34
aquí es donde se va a insertar
00:26:36
el fragmento que quiero amplificar.
00:26:38
¿De acuerdo?
00:26:42
Por tanto, un origen de replicación,
00:26:43
el polilínquer,
00:26:46
un marcador de selección
00:26:49
y un marcador de identificación.
00:26:51
Ya hemos dicho,
00:26:53
y tiro otra vez para atrás,
00:26:55
que una vez que ya he introducido el vector
00:26:57
en la célula hospedadora
00:27:01
y se ha amplificado,
00:27:03
debo de llevar a cabo un proceso de selección.
00:27:04
Este proceso de selección
00:27:06
lo puedo llevar a cabo gracias
00:27:08
a que en el vector tengo
00:27:10
un marcador de selección
00:27:12
y un marcador de identificación.
00:27:14
¿Qué es el marcador de selección
00:27:16
y el marcador de identificación?
00:27:18
Son dos genes.
00:27:20
Dos genes que yo he introducido en el vector.
00:27:22
El marcador de selección
00:27:24
me va a permitir determinar
00:27:26
cuál de esas células,
00:27:28
quién lleva el vector.
00:27:30
¿Vale?
00:27:32
Por tanto,
00:27:34
de todas las bacterias,
00:27:36
¿cuáles han introducido el vector?
00:27:38
Tienen el vector.
00:27:40
Pero, ¡ojo!
00:27:42
Ese vector puede ser vector normal,
00:27:44
vacío,
00:27:46
o puede ser vector recombinante.
00:27:48
Por tanto,
00:27:50
y esto no lo he explicado antes,
00:27:52
lo explico ahora.
00:27:54
Algunas de estas células,
00:27:56
cuando yo hago este proceso
00:27:58
de insertar el fragmento
00:28:00
en el plásmido,
00:28:02
algunos de estos plásmidos
00:28:04
no lo introducen
00:28:06
y lo único que hacen es
00:28:08
se vuelven a unir.
00:28:10
De tal manera que tendré plásmidos vacíos
00:28:12
y plásmidos recombinantes.
00:28:14
Vectores vacíos,
00:28:16
vectores recombinantes.
00:28:18
Cuando yo coja esta mezcla
00:28:20
y la introduzca dentro de las células,
00:28:22
habrá células que introducirán
00:28:24
el vector recombinante
00:28:26
y células que introducirán vector vacío.
00:28:28
¿De acuerdo?
00:28:30
El marcador de selección
00:28:32
me permite discriminar
00:28:34
las células vacías
00:28:36
que no tienen vector
00:28:38
de las células que llevan vector.
00:28:40
Y el marcador de identificación
00:28:42
me permite determinar
00:28:44
dentro de las que llevan vector
00:28:46
las que llevan vector vacío
00:28:48
de las que llevan vector recombinante.
00:28:50
¿De acuerdo?
00:28:52
Todo esto lo vamos a ver
00:28:54
ahora más adelante.
00:28:56
¿Qué tipos de vectores tenemos?
00:29:02
El más utilizado,
00:29:04
los más utilizados son los plásmidos
00:29:06
que ya sabemos que son moléculas
00:29:08
de DNA circular,
00:29:10
bicatenario,
00:29:12
que poseen un origen de replicación
00:29:14
¿De acuerdo?
00:29:16
Y que sabemos
00:29:18
que tienen capacidad
00:29:20
de autorreplicación,
00:29:22
replicación autónoma.
00:29:24
Normalmente todos estos plásmidos
00:29:26
son de origen bacteriano,
00:29:28
contienen un origen de replicación bacteriano,
00:29:30
es un oricén,
00:29:32
y suelen llevar
00:29:34
incorporado, porque nosotros
00:29:36
le solemos incorporar,
00:29:38
un gen de resistencia a un antibiótico.
00:29:40
¿De acuerdo?
00:29:42
Un gen de resistencia a un antibiótico.
00:29:44
En este caso es un gen de resistencia
00:29:48
a ampicilina.
00:29:50
De tal manera que
00:29:52
este va a ser mi marcador de selección.
00:29:54
¿Por qué es el marcador de selección?
00:29:58
¿Por qué es el marcador de selección?
00:30:00
Bueno,
00:30:02
esto lo voy a explicar un poquito más adelante.
00:30:04
¿De acuerdo?
00:30:06
Pero este sería mi marcador de selección.
00:30:08
De tal manera que aquí tengo el plásmido
00:30:10
que va a ser mi vector.
00:30:12
Los plásmidos se utilizan muchísimo como vectores.
00:30:14
Ya lo he dicho.
00:30:16
¿Cómo seleccionamos cuál es el plásmido adecuado?
00:30:18
Pues nos vamos a fijar en dos parámetros importantes.
00:30:20
El primero, el tamaño del inserto.
00:30:22
Hay plásmidos que admiten
00:30:24
insertos
00:30:26
grandes.
00:30:28
Un inserto muy grande,
00:30:30
de kilobases.
00:30:32
Hay otros plásmidos
00:30:34
que soportan
00:30:36
y pueden transportar
00:30:38
insertos más pequeños.
00:30:40
Dependiendo del tamaño del inserto,
00:30:42
elijo un plásmido u otro.
00:30:44
Y en segundo lugar, el número de copias
00:30:46
del plásmido por célula.
00:30:48
En este ejemplo, este plásmido
00:30:50
su número de copias es 3.
00:30:52
Cada célula puede soportar
00:30:54
3 copias
00:30:56
como máximo.
00:30:58
El número de copias es mucho mayor.
00:31:00
Se pueden auto-replicar
00:31:02
hasta 50 veces.
00:31:04
Con una sola bacteria
00:31:06
tendría 50 copias
00:31:08
del inserto.
00:31:10
De mi fragmento de interés.
00:31:12
Dependiendo del tamaño del inserto
00:31:14
y del número de copias del plásmido,
00:31:16
voy a elegir un vector u otro.
00:31:18
Aquí, por ejemplo,
00:31:20
el libro nos pone estos dos ejemplos.
00:31:22
Hay cientos y cientos
00:31:24
de vectores plasmídicos
00:31:26
disponibles.
00:31:28
Para los laboratorios de
00:31:30
biología molecular.
00:31:32
Este de aquí, ya veis por ejemplo
00:31:34
que tiene el oricé
00:31:36
y tiene dos genes de resistencia.
00:31:38
Un gen de resistencia
00:31:40
a ampicilina y un gen de resistencia
00:31:42
a tetraciclina. Ya hemos dicho antes
00:31:44
que los marcadores de selección
00:31:46
y los marcadores de identificación
00:31:48
suelen ser genes. Genes de resistencia
00:31:50
a antibióticos.
00:31:52
En este caso, también lleva el gen
00:31:54
de resistencia a ampicilina
00:31:56
¿De acuerdo?
00:31:58
Como marcador de selección.
00:32:00
Lleva su oricé y aquí
00:32:02
nos han puesto un gen LAGZ
00:32:04
que ya veremos para qué se utiliza
00:32:06
y su polilínquer. En este caso,
00:32:08
este vector no tiene
00:32:10
un polilínquer delimitado
00:32:12
en una región muy específica y pequeñita
00:32:14
sino que el polilínquer está
00:32:16
a lo largo de
00:32:18
toda la secuencia
00:32:20
del plásmido.
00:32:22
Hay diferentes tipos de plásmidos
00:32:24
con diferentes características.
00:32:26
Este, por ejemplo, admite
00:32:28
genes pequeños
00:32:30
y tiene un número de copia de 20.
00:32:32
Este, en cambio, admite
00:32:34
hasta 10 kilobases, 10.000
00:32:36
pares de bases, que son insectos grandes
00:32:38
y tiene una alta tasa
00:32:40
de replicación, 500 copias por célula.
00:32:42
De tal manera que si yo tengo
00:32:44
500 células, pues entonces
00:32:46
tendré 500 por 500
00:32:48
25.000
00:32:50
o 250.000, si no me equivoco
00:32:52
250.000 copias
00:32:54
del insecto.
00:32:56
¿De acuerdo? Hemos dicho
00:32:58
que los marcadores de selección
00:33:00
e identificación son genes de resistencia
00:33:02
ampicilina.
00:33:04
¿Por qué se utilizan genes de resistencia
00:33:06
ampicilina, tetraciclina, cannamicina,
00:33:08
antibióticos? ¿Por qué?
00:33:10
Porque eso me va a permitir seleccionar
00:33:12
y tiro para atrás otra vez
00:33:14
qué células
00:33:16
tienen el vector.
00:33:18
De tal manera que yo
00:33:20
estas células, hemos dicho que una vez
00:33:22
que han introducido el vector
00:33:24
recombinante, estas células
00:33:26
las vamos a
00:33:28
poner en cultivo.
00:33:30
Pero las vamos a poner en cultivo
00:33:32
y en el medio de cultivo, además de todos
00:33:34
los nutrientes que necesitan las bacterias
00:33:36
voy a poner un antibiótico, que es
00:33:38
ampicilina. De tal manera que
00:33:40
sólo aquellas células que hayan
00:33:42
introducido y sean
00:33:44
células recombinantes, clones
00:33:46
recombinantes, van a poder
00:33:48
sobrevivir. ¿Por qué?
00:33:50
Porque habrán incorporado
00:33:52
el marcador de selección, que
00:33:54
no es ni más ni menos
00:33:56
que el gen de resistencia
00:33:58
a la ampicilina. Es un gen
00:34:00
que permite a la bacteria introducir
00:34:02
la ampicilina y romperla.
00:34:04
De tal manera que hace que esta bacteria
00:34:06
sea resistente a la ampicilina.
00:34:08
Por tanto, ¿qué bacterias
00:34:10
serán resistentes a la ampicilina?
00:34:12
Solamente
00:34:14
aquellas que contengan el
00:34:16
plásmido, el vector recombinante.
00:34:18
¿De acuerdo?
00:34:20
Además de plásmidos, que son los que más
00:34:24
se utilizan, luego tenemos bacteriófagos.
00:34:26
Es decir, virus,
00:34:28
los bacteriófagos o fagos en general
00:34:30
son los virus que infectan
00:34:32
bacterias. Entonces, de tal
00:34:34
manera que yo puedo coger un virus
00:34:36
dentro de su genoma, meterle el
00:34:38
fragmento de interés
00:34:40
y hacer que el virus propague
00:34:42
ese
00:34:44
fragmento infectando a las
00:34:46
bacterias. De tal manera que vaya
00:34:48
introduciendo, si recordáis, por
00:34:50
el ciclo lítico lisogénico
00:34:52
introduzca, llega
00:34:54
el virus, según
00:34:56
su ciclo, llega el virus y lo
00:34:58
normal es que introduzca todo
00:35:00
su genoma
00:35:02
y lo inserte,
00:35:04
si sigue el ciclo lisogénico,
00:35:06
que lo vamos a ver rápidamente,
00:35:08
inserte este fragmento suyo
00:35:10
de su genoma en el cromosoma
00:35:12
bacteriano. ¿De acuerdo?
00:35:14
De tal manera que la bacteria cuando se duplica
00:35:16
va duplicando
00:35:18
el genoma del
00:35:20
virus. Si yo dentro del
00:35:22
genoma del virus además
00:35:24
he añadido aquí dentro
00:35:26
mi fragmento de interés,
00:35:28
utilizo como vector el virus
00:35:30
y el virus va infectando bacterias,
00:35:32
va introduciendo en las bacterias
00:35:34
mi gen de interés
00:35:36
junto con su genoma
00:35:38
y a medida que se amplifican
00:35:40
las bacterias, pues se va
00:35:42
amplificando también el genoma del virus
00:35:44
y mi inserto.
00:35:46
¿De acuerdo? En determinadas
00:35:48
circunstancias de este ciclo lisogénico
00:35:50
un virus puede
00:35:52
hacer un ciclo lítico y por tanto
00:35:54
producir más viriones,
00:35:56
lisar la bacteria
00:35:58
y producir más virus que vayan a infectar
00:36:00
más bacterias. ¿De acuerdo?
00:36:02
Por tanto, puedo utilizar bacteriófagos,
00:36:04
virus,
00:36:06
como vectores para llevar
00:36:08
mi inserto de unas células
00:36:10
a otras por medio del
00:36:12
ciclo de infección
00:36:14
normal de los virus.
00:36:16
Estos de aquí, los virus
00:36:22
que siguen un ciclo lisogénico pueden
00:36:24
insertar temporalmente su material genético
00:36:26
como ya hemos dicho dentro del
00:36:28
genoma de las bacterias.
00:36:30
El que más se utiliza bacteriófago
00:36:32
como vector de clonación
00:36:34
es el fago lambda.
00:36:36
Tenemos aquí su estructura
00:36:38
¿De acuerdo? Con una región izquierda,
00:36:40
una central y una derecha
00:36:42
y aquí se utiliza mucho el fago lambda
00:36:44
para insertar en estas
00:36:46
zonas de CoR1
00:36:48
que es una enzima de restricción
00:36:50
para insertar los fragmentos de interés.
00:36:52
¿De acuerdo?
00:36:54
Muy bien.
00:36:56
Tenemos los cósmidos. Los cósmidos son
00:36:58
vectores híbridos que tienen
00:37:00
una parte del cromosoma del fago
00:37:02
y una parte del plásmido y permiten
00:37:04
insertos de hasta 50.000
00:37:06
pares de bases.
00:37:08
Los fagémidos que también son
00:37:10
vectores híbridos que están compuestos por
00:37:12
un plásmido ¿De acuerdo?
00:37:14
con su origen de replicación bacteriano
00:37:16
y le insertamos también un origen de replicación
00:37:18
del fago M13.
00:37:20
Se utiliza muy poco
00:37:22
los fagémidos y para
00:37:24
usos muy específicos.
00:37:26
Y después tenemos los cromosomas
00:37:28
artificiales. Los cromosomas artificiales
00:37:30
son vectores de clonación con gran
00:37:32
capacidad de tal manera
00:37:34
que podemos insertarles
00:37:36
fragmentos enormes, de gran tamaño.
00:37:38
Tenemos dos tipos diferentes.
00:37:40
Le llamamos cromosomas porque son
00:37:42
muy grandes pero tiene una
00:37:44
estructura parecida a los cromosomas eucariotas
00:37:46
pero no son cromosomas
00:37:48
eucariotas. Son cromosomas
00:37:50
artificiales que pueden ser bacterianos
00:37:52
por tanto con toda la estructura
00:37:54
de un cromosoma bacteriano
00:37:56
que permiten insertos de hasta
00:37:58
300 kilobases
00:38:00
300.000 pares de bases
00:38:02
y los artificiales de
00:38:04
levaduras
00:38:06
los GIST Artificial Chromosomes
00:38:08
JAX en inglés
00:38:10
por las siglas en inglés
00:38:12
que alcanzan millones
00:38:14
de pares de bases. Más
00:38:16
de una megabase.
00:38:18
Los hay incluso de dos megabases.
00:38:20
Esto en cuanto
00:38:22
a los vectores. Ya hemos dicho
00:38:24
que además de los vectores y del inserto
00:38:26
necesitamos
00:38:28
también los vectores lanzadera.
00:38:30
Se utilizan muy poco y estos vectores lanzadera
00:38:32
los vamos a utilizar para meter
00:38:34
un gen y que nos sirva para
00:38:36
transportarlo entre dos
00:38:38
tipos de células.
00:38:40
Son también vectores híbridos
00:38:42
contienen orígenes de replicación
00:38:44
de dos hospedadores por ejemplo
00:38:46
de bacterias y de células eucariotas
00:38:48
o de bacterias y virus
00:38:50
y solamente se utilizan
00:38:52
como transbordadores.
00:38:54
Para transportar el fragmento
00:38:56
de un tipo de célula a otra
00:38:58
utilizamos los vectores
00:39:00
lanzaderas.
00:39:02
Además de los vectores
00:39:06
necesitamos células hospedadoras
00:39:08
por supuesto.
00:39:10
¿Cómo definimos las células hospedadoras?
00:39:12
Pues aquellas en las que vamos a poder
00:39:14
introducir el vector de clonación
00:39:16
para que se pueda amplificar
00:39:18
el inserto.
00:39:20
Por tanto deben ser células
00:39:22
que permitan
00:39:24
y que puedan albergar
00:39:26
vectores de clonación.
00:39:28
Las cultivamos en medio
00:39:30
de cultivos adecuados
00:39:32
en los que se van a multiplicar
00:39:34
¿De acuerdo?
00:39:36
En los que se van a seleccionar
00:39:38
y van a dar lugar a las células hijas.
00:39:40
Todas ellas
00:39:42
con la misma carga genética
00:39:44
incluido el vector.
00:39:46
Todas ellas van a contener el vector
00:39:48
por eso las llamamos clones.
00:39:50
Son clónicas a la primera célula.
00:39:52
¿De acuerdo?
00:39:54
Y por eso las llamamos a todas ellas
00:39:56
componentes.
00:39:58
Las células que más se utilizan
00:40:00
son las células bacterianas, son prokaryotas
00:40:02
son células
00:40:04
muy, muy utilizadas
00:40:06
y en ellas podemos clonar
00:40:08
por supuesto plásmidos,
00:40:10
fagos y cósmidos.
00:40:12
¿De acuerdo?
00:40:14
Son células muy fácilmente
00:40:16
se pueden transformar de forma
00:40:20
muy fácil
00:40:22
y que son células muy versátiles
00:40:24
de tal manera que además crecen
00:40:26
con mucha rapidez.
00:40:28
Todo esto son ventajas de las bacterias.
00:40:30
Las que más se utilizan son
00:40:32
Escherichia coli, hay que conocerla.
00:40:34
Escherichia coli es una bacteria
00:40:36
intestinal, la tenemos en el colon
00:40:38
todos los seres humanos
00:40:40
y la mayoría de los mamíferos
00:40:42
Escherichia coli, en concreto dos cepas
00:40:44
que es la cepa K12
00:40:46
y la cepa DH5 alfa.
00:40:48
Estas dos cepas
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se utilizan muchísimo
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y son cepas que llamamos bacterias
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competentes.
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Están tratadas
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de tal manera que
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permiten, están preparadas
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para que puedan albergar
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estos vectores de clonación.
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Y luego tenemos
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células hospedadoras eucariotas
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que pueden ser
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levaduras, células vegetales, animales
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o de mamíferos.
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¿De acuerdo?
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Por ejemplo, de levaduras
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la que más se utiliza son
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como levaduras Saccharomyces cerevisiae
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y Saccharomyces
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cerevisiae
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Hay que conocerlas.
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Saccharomyces cerevisiae
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es una levadura que se utiliza muchísimo
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como célula hospedadora eucariota.
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En células
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vegetales y animales
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las utilizamos para genes
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para insertar genes
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siempre y cuando queramos
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obtener
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plantas o animales transgénicos.
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Por tanto,
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de forma rutinaria
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no se suelen utilizar células vegetales
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solamente para amplificar
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un fragmento de DNA.
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Para amplificar un fragmento de DNA
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y obtener muchas copias
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utilizamos levaduras.
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¿Cuándo utilizaremos células vegetales y animales?
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Cuando queramos obtener plantas
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y animales transgénicos.
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- Idioma/s:
- Autor/es:
- Pedro Melgar-Rojas
- Subido por:
- Pedro M.
- Licencia:
- Reconocimiento - No comercial - Sin obra derivada
- Visualizaciones:
- 76
- Fecha:
- 2 de febrero de 2024 - 19:16
- Visibilidad:
- Clave
- Centro:
- IES BENJAMIN RUA
- Duración:
- 42′ 14″
- Relación de aspecto:
- 1.78:1
- Resolución:
- 1280x720 píxeles
- Tamaño:
- 65.32 MBytes