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Enterotubos - Contenido educativo

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Subido el 18 de marzo de 2024 por Raquel M. B.

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Los enterotubos son sistemas de 12 sectores que contienen medios de cultivo que permiten 00:00:08
identificar bacterias de la familia de las enterobacterias y también algunas otras que 00:00:14
sean gran negativas y oxidasa negativas. El sistema permite inocular simultáneamente 00:00:19
todos los medios de cultivo y ejecutar 15 reacciones bioquímicas. Según la interpretación 00:00:26
de estas reacciones bioquímicas como positivas o negativas, tras la incubación se obtiene 00:00:32
una codificación numérica que permitirá identificar al microorganismo sembrado. Los reactivos se pueden 00:00:38
comprar ya preparados pero también pueden hacerse en el laboratorio. El reactivo de COVAX se prepara 00:01:10
disolviendo el perimetilaminobenzaldehido en alcohol y luego se añade lentamente el ácido. 00:01:16
Así preparado debe tener un color amarillo paja y si se observa en cualquier momento un color 00:01:22
marrón oscuro no debe utilizarse. Se debe preparar en vitrina de gases y se almacena 00:01:27
en un frasco de color topacio y en refrigeración. Los reactivos Borges-Proskauer 1 y 2 pueden ser 00:01:33
preparados como se indica en el vídeo. Después de su preparación son estables durante algunas 00:01:40
semanas en frasco color topacio, cerrados herméticamente y mantenidos en refrigeración. 00:01:46
El microorganismo a identificar ha de ser de aislamiento reciente. 00:01:53
Si procede de cultivos con más de 48 horas, pueden dar lugar a resultados erróneos. 00:02:10
Antes de sembrar el microorganismo, es necesario realizar una tinción de gram y la prueba de la oxidasa. 00:02:16
Podrán ser sembradas las bacterias gram negativas que sean oxidasa negativas. 00:02:21
Para ilustrar esta práctica se utilizarán los sistemas de la marca Entero Pluritest de la casa comercial Leofilchem 00:02:26
Se toma un sistema Entero Pluritest y se anota la identificación de la muestra y la fecha de ejecución 00:02:36
A continuación se desenroscan ambos capuchones del sistema, trabajando junto al mechero 00:02:47
Utilizando la punta del hilo de inoculación colocada bajo el capuchón blanco y sin flamear, se toma una colonia bien aislada, teniendo cuidado de no penetrar en el agar que la sustenta 00:03:01
Se debe observar una cantidad visible de inóculo en la punta 00:03:20
Se inocula el sistema tirando del hilo por el extremo opuesto, girándolo y extrayéndolo a través de todos los sectores del sistema 00:03:24
Después se reintroduce el hilo con un movimiento giratorio hasta la muesca de rotura 00:03:38
Se rompe el hilo por la muesca plegándolo 00:04:02
La parte del hilo que queda dentro del sistema mantiene el ambiente anaerobio necesario 00:04:19
para las reacciones de los compartimentos glucosa, lisina y ornitina 00:04:24
Utilizando la parte del hilo que ha quedado rota y que no se ha depositado en ningún sitio 00:04:30
continuando en la mano del operador se agujerea la película de plástico por los orificios 00:04:35
correspondientes de los sectores adonitol, lactosa, arabinosa, sorbitol, vp, dulcitol pa, urea y 00:04:40
citrato para aportar un ambiente aerobio. La punta se desecha a bolsa de autoclave y ya por último se 00:04:49
enroscan los dos capuchones. El entero tubo inoculado se incuba colocándolo horizontalmente 00:05:00
o de forma vertical en una gradilla, a 36ºC durante 18-24 horas. 00:05:15
Así acaba la primera sesión de trabajo. 00:05:22
Tras la incubación, se observa el viraje de color de los sectores 00:05:27
y se interpretan los resultados con la tabla junta. 00:05:30
Se van transcribiendo los resultados obtenidos a la hoja de recogida de datos. 00:05:38
Para constatar como positivo el test gas, 00:05:42
se debe observar si la cera está separada del medio o no. 00:05:45
En este caso es positivo. 00:05:48
Se siguen apuntando los resultados, como positivos o negativos, según el color observado. 00:05:50
Para las pruebas de indol y vp es necesario añadir reactivos. Para ello hay que agujerear 00:06:28
la película de plástico. Lo más seguro para esto es utilizar una punta de pipeta 00:06:33
estéril. Se hace un orificio de aproximadamente 3 o 4 mm de diámetro. 00:06:38
Para el test del indol se añaden 3 o 4 gotas de reactivo de COVAX en el sector H2S indol. 00:06:44
realizan la campana de gases. La reacción positiva sería la aparición de una coloración rosa-roja 00:06:51
antes de 10-15 segundos. En este caso es negativa. Para el test de Bohr-Sproch-Cower se añade en el 00:06:58
compartimento VP3 o 4 gotas del reactivo de VP1 y a continuación 2 o 3 gotas del reactivo VP2. 00:07:12
La reacción positiva sería la aparición de una coloración roja antes de 20 segundos. 00:07:22
En este caso es positiva. 00:07:29
Ya solo resta obtener el código numérico. 00:07:43
Los 15 test bioquímicos se encuentran divididos en 5 grupos que contienen 3 test 00:07:46
y a cada uno se le asigna un valor de positividad. 00:07:51
4 para el primer test positivo de cada grupo, 2 para el segundo y 1 para el tercero. 00:07:54
En caso de que el test sea negativo se le asigna 0. 00:07:59
Se suma entonces los valores para cada grupo y sostiene un código de 5 cifras. 00:08:03
Este código se busca en el manual que la casa comercial pone a disposición de los clientes 00:08:07
y que se puede consultar en la página web indicada. 00:08:12
En el caso analizado, el código obtenido ha sido el 64163, 00:08:16
correspondiendo a la especie Enterobacter cloacae. 00:08:23
Los enterotubos, una vez analizados, se depositan en doble bolsa de autoclave 00:08:30
y se llevan al mismo a 121 grados durante 15 minutos. 00:08:34
Luego la bolsa se anuda y se desecha. 00:08:39
Idioma/s:
es
Autor/es:
Raquel Bermejo
Subido por:
Raquel M. B.
Licencia:
Reconocimiento - No comercial
Visualizaciones:
68
Fecha:
18 de marzo de 2024 - 17:03
Visibilidad:
Clave
Centro:
IES LOPE DE VEGA
Duración:
08′ 52″
Relación de aspecto:
1.78:1
Resolución:
1280x720 píxeles
Tamaño:
203.06 MBytes

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